
本產(chǎn)品適用于從瓊脂糖凝膠或PCR產(chǎn)物、酶切產(chǎn)物中回收DNA,可回收100-10kb的DNA片段。采用了高效的膠溶解技術(shù)和高載量的硅基提取柱,具有回收得率和純度高、操作簡(jiǎn)單、耗時(shí)短等優(yōu)點(diǎn)。
本試劑盒提取的DNA可用于下游的酶切、PCR擴(kuò)增、DNA測(cè)序、連接轉(zhuǎn)化、文庫(kù)構(gòu)建等。



一、膠回收
準(zhǔn)備工作:次使用時(shí),在Wash Buffer中加入4倍體積的無(wú)水乙醇。將水浴鍋打開(kāi),設(shè)置為55℃。
1、在紫外燈下從瓊脂糖凝膠中切下目標(biāo)條帶,盡量精確切割目標(biāo)條帶,去除不含DNA的多余瓊脂糖凝膠。(盡可能縮短紫外線長(zhǎng)照射,避免DNA因紫外照射發(fā)生交聯(lián)引起突變)
2、稱(chēng)量切下的膠條后置于干凈的2ml離心管中(可通過(guò)稱(chēng)量加入膠條前后離心管的重量來(lái)計(jì)算膠條重量),加入3倍膠條體積的Buffer GM。(100mg膠條相當(dāng)于100μl體積。如膠條過(guò)大,可分多管溶解,每管中膠條重量不超過(guò)400mg)
注:當(dāng)瓊脂糖凝膠濃度>2%時(shí),加入6倍體積的Buffer GM。
3、將離心管在55℃水浴中孵育5-10分鐘,期間渦旋樣品幾次,直至凝膠完全溶解。
4、加入1倍膠條體積的異丙醇。
5、將提取柱置于收集管上,將樣品加入到提取柱中(單次添加的樣品體積不超過(guò)800μl),靜置2min, 12000rpm離心1min,之后棄去收集管中的液體。(如樣品體積過(guò)多,可分多次過(guò)柱)。
6、在提取柱中加入600μl Wash Buffer(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇),12000rpm離心30-60s,棄去收集管中的液體。
7、重復(fù)操作步驟6.
8、將提取柱放回收集管中,12000rpm離心2min,盡量除盡清洗液。將提取柱置于室溫放置數(shù)分鐘,晾干以防止殘留的清洗液影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
9、將提取柱置于干凈的1.5ml離心管上,在提取柱中加入60-80μl無(wú)菌水或Buffer EB(盡量滴加在膜中央),靜置1min后12000rpm離心2min。(使用55℃預(yù)熱的水或Buffer EB能夠提高洗脫效率)
二、PCR產(chǎn)物回收
1、將PCR/酶切產(chǎn)物轉(zhuǎn)移至干凈離心管中,加入5倍體積的Buffer PB。(如樣品體積≤50μl,則加入250μl Buffer PB)
2、將提取柱置于收集管上,將樣品加入到提取柱中,12000rpm離心1min,棄去收集管中的液體。
3、在提取柱中加入500μl Wash Buffer,靜置2min,12000rpm離心30s,棄去收集管中的液體。
4、在提取柱中加入200μl Wash Buffer,12000rpm離心1min。
5、將提取柱置于干凈的1.5ml離心管中,在提取柱中加入30-50μl無(wú)菌水或Buffer EB(盡量滴加在膜中央),靜置1min后12000rpm離心1min。(使用55℃預(yù)熱的水或Buffer EB能夠提高洗脫效率)

1、產(chǎn)品可在15-25℃條件下保存15個(gè)月以上。
2、次使用時(shí)請(qǐng)根據(jù)試劑瓶上說(shuō)明在Wash Buffer中加入乙醇。
3、Buffer GM和Buffer PB含有高濃度鹽分,在低溫下或長(zhǎng)期保存會(huì)出現(xiàn)結(jié)晶,屬正常現(xiàn)象。如出現(xiàn)混濁或結(jié)晶,可在37℃孵育5-10min,即可恢復(fù)澄清,不影響使用。
4、本產(chǎn)品的DNA回收率與初始DNA量有關(guān),初始量越低,回收率越低。
5、對(duì)于<100bp或>10kb的樣品,可適當(dāng)增加吸附時(shí)間和洗脫時(shí)間。
6、Buffer EB可在使用前在55℃水浴預(yù)熱,以增加洗脫效率。
7、為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
8、本產(chǎn)品僅限于專(zhuān)業(yè)人員的科學(xué)研究用,不得用于臨床診斷或治療,不得用于食品或藥品,不得存放于普通住宅內(nèi)。
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答:可能的原因有:
1、目的蛋白有多個(gè)修飾位點(diǎn),本身可以呈現(xiàn)多條帶,建議查閱文獻(xiàn)或進(jìn)行生物信息學(xué)分析,獲得蛋白序列的修飾位點(diǎn)信息,通過(guò)去修飾確定蛋白實(shí)際大小;
2、樣本處理過(guò)程中目的蛋白發(fā)生降解,建議加入蛋白酶抑制劑;樣本處理時(shí)在冰上操作;
3、雜蛋白多,建議處理目的蛋白;
4、抗體特異性不強(qiáng),建議使用特異性強(qiáng)的抗體;
5、抗體孵育時(shí)間過(guò)久,建議減少抗體孵育時(shí)間;
6、二抗與抗原有交叉反應(yīng),建議選擇合適的封閉物;
7、二聚體或多聚體存在,建議增加蛋白質(zhì)變性過(guò)程及強(qiáng)度;
8、底物顯色與曝光時(shí)間過(guò)長(zhǎng),建議縮短顯色及曝光的時(shí)間。
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